常规涂片染色一般都有2张或2张以上的涂片,当诊断需要再行其他特殊染色或免疫细胞化学染色时,需要将其中一张片脱色来重新染色; 一些旧片因褪色,或染色错误,也需要将其脱色后再进行重染。(1)去除盖玻片: 将片子先轻微加热,使中...[继续阅读]

    1.离心沉淀 将标本液体上半部轻轻倒掉,保留底部沉淀物20mL。摇匀后注入2～4支锥形离心管内,平衡后中速(2000转/分),离心5～10min。2. 标本取材 将离心后上清液用毛细吸管吸出弃掉,若为血性胸、腹腔积液则吸取红细胞沉淀层与上清液...[继续阅读]

    (1)取离心沉淀标本,用毛细吸管滴1小滴位于载玻片1/3处,即置于载玻片的一侧端。(2)然后取一玻片与载玻片呈30° 的夹角,将标本液夹在两玻片之间向前推进,涂片形成头、体、尾三部分,肿瘤细胞多数集中在尾部。...[继续阅读]

    1. 固定液选择 细胞涂片以高浓度的固定液为佳,常用乙醇-乙醚固定液。高浓度的固定液无论是细胞形态的保存,还是细胞在玻片上的黏附都优于其他固定剂。2. 固定方法 涂片制作完成后应立即垂直投进细胞固定液内固定,固定液必须...[继续阅读]

    染色前先按次序整理申请单,并与玻片核对名字、编号及玻片数量。细胞学常规染色方法首选巴氏染色法,大量妇科宫颈细胞学检查或穿刺涂片亦可用常规HE染色。血液细胞学涂片检查可用瑞氏染色、吉姆萨染色。...[继续阅读]

    (1)细胞样本离心后,如果细胞数量较多,制作涂片时,除了吸取底层细胞外,还应吸取小许上层液体混合后再涂片,避免细胞过多重叠,引起细胞脱落。(2)用做推片的载玻片与液体接触的角度大小,直接影响涂片的均匀与细胞成分分布的厚度...[继续阅读]

    (1)尿液细胞涂片制作,标本采集和处理,尿液采集需要避免清晨第一次晨尿,因晨尿内会有较多残渣和退行性变的细胞。男性患者可自行排尿,收集中、后段排出尿;女性患者一般采用导管尿,或收集中、后段尿。(2)标本收集后在1～2h内完...[继续阅读]

    (1)将尿液倒去上清液,留下50～100mL底层尿液分别注入2支50mL尖底离心管内。(2)经平衡配置后放入离心机以2000转/分,离心7min,2次。(3)倾去标本的上清液,或用毛细玻璃吸管吸去上清液。(4)将沉渣用玻璃棒或吸管搅匀沉淀物。(5)吸取1～2滴...[继续阅读]

    (1)涂片制作完成后应立即垂直投进等量的乙醇-乙醚固定液固定。(2)细胞成分少,标本可潮干或半潮干固定。...[继续阅读]

    尿液细胞涂片染色方法首选巴氏染色法,选用EA36染液或EA50染液,细胞核和胞质着色鲜艳、染色质清晰。...[继续阅读]